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抗體檢測知多少?這些方法你都知道嗎?

發(fā)布時間:2023-12-22     發(fā)布作者:上海通蔚生物

抗體是各種實驗室技術的強大研究工具。在這里,上海通蔚給大家介紹一些檢測抗體的常用方法,這些方法包括酶聯(lián)免疫吸附測定 (ELISA)、酶聯(lián)免疫斑點 (ELISPOT)、蛋白質(zhì)印跡 (WB)、免疫沉淀 (IP) 和染色質(zhì)免疫沉淀 (ChIP)、免疫組織化學 (IHC)、免疫細胞化學(ICC)、流式細胞儀和 FACS。


內(nèi)容

1. 酶聯(lián)免疫吸附測定 (ELISA)

2. 酶聯(lián)免疫斑點 (ELISPOT)

3. 蛋白質(zhì)印跡 (WB)

4. 免疫沉淀 (IP) 和染色質(zhì)免疫沉淀 (ChIP)

5. 免疫組織化學 (IHC)

6. 免疫細胞化學(ICC)

7. 流式細胞儀和FACS


  酶聯(lián)免疫吸附測定 (ELISA)


  ELISA 是一種基于板的技術,能夠檢測生物樣品中的抗原。與其他免疫測定一樣,ELISA 依靠抗體利用高度特異性的抗體-抗原相互作用來檢測目標抗原。ELISA 能夠?qū)Ψ治鑫锖头肿酉嗷プ饔眠M行定量和表征。


  在 ELISA 中,抗原直接固定在固體表面上,或者更常見的是通過捕獲抗體固定在固體表面上,捕獲抗體本身也固定在表面上(圖 1)。清洗表面,然后與與酶或熒光團等分子綴合的檢測抗體一起孵育。


酶聯(lián)免疫吸附測定

  在抗原存在的情況下,這些檢測抗體將保持與板結合,從而提供信號。該信號的強度對應于樣品內(nèi)的抗原濃度。


  圖 1.夾心 ELISA 設置。多孔板上的捕獲抗體將固定感興趣的抗原。該抗原將被與生物素和鏈霉親和素-HRP 綴合的檢測抗體識別并結合。


  ELISA 通常在多孔板(96 或 384 孔)中進行,分析物的固定有助于將抗原與其余樣品成分分離。這些特性使 ELISA 成為同時對多個樣品進行的最簡單的檢測方法之一。


  ELISA 有四種主要類型:直接法、間接法、夾心法和競爭法,每種類型都有獨特的優(yōu)點、缺點和適用性。每個實驗最合適的 ELISA 形式取決于許多因素,包括所需的靈敏度、特異性和測定時間。詳細了解,請點擊elisa的類型。


  酶聯(lián)免疫斑點 (ELISPOT)


  酶聯(lián)免疫斑點 (ELISPOT) 用于檢測細胞分泌的蛋白質(zhì),例如細胞因子和生長因子。該技術能夠量化和比較對各種刺激的免疫反應。


  細胞在帶有抗體包被的 PVDF 或硝酸纖維素膜的 96 孔板中生長。使用一抗和綴合二抗檢測感興趣的分泌蛋白。分泌感興趣蛋白質(zhì)的細胞將顯示為彩色或熒光點。對膜進行掃描和分析,以量化分泌蛋白質(zhì)的細胞的數(shù)量或比例。


  蛋白質(zhì)印跡 (WB)


  蛋白質(zhì)印跡廣泛用于分離和鑒定蛋白質(zhì)的研究中。蛋白質(zhì)印跡使我們能夠檢測蛋白質(zhì),確定樣品之間的相對蛋白質(zhì)水平,并確定目標的分子量,從而深入了解其翻譯后處理。


  蛋白質(zhì)印跡涉及三個主要步驟:(1) 按大小分離蛋白質(zhì),(2) 將蛋白質(zhì)轉移到膜上,以及 (3) 使用一抗和二抗可視化目標蛋白。


  第一步,將蛋白質(zhì)加載到凝膠上,并通過凝膠電泳根據(jù)大小進行分離。然后利用電流將蛋白質(zhì)條帶遷移到膜上。蛋白質(zhì)轉移到膜上是必不可少的,因為用于電泳的凝膠為隨后的免疫染色提供了較差的表面,即抗體不會粘附到凝膠的蛋白質(zhì)上。


  最后,膜可以用感興趣目標的特異性抗體進一步進行免疫染色,并使用二抗和檢測試劑進行可視化。


  免疫沉淀 (IP) 和染色質(zhì)免疫沉淀 (ChIP)


  免疫沉淀 (IP) 是一種分離和純化單個蛋白質(zhì)和復合蛋白質(zhì)的多功能技術。在該技術中,抗體被固定在固相基質(zhì)(例如磁珠/瓊脂糖珠)上,從復雜溶液中捕獲抗原。


  染色質(zhì)免疫沉淀 (ChIP) 用于確定給定蛋白質(zhì)是否在體內(nèi)與特定 DNA 序列結合。ChIP 使研究人員能夠識別整個基因組中感興趣的蛋白質(zhì)結合的特定基因和序列,從而為其調(diào)控功能和機制提供關鍵線索。


  ChIP 程序(圖 3)利用抗體對感興趣的蛋白質(zhì)(例如轉錄因子)及其相關 DNA 進行免疫沉淀。然后回收相關的 DNA,并通過 PCR、微陣列或測序進行分析,以確定基因組序列和蛋白質(zhì)結合的位置。


  免疫組織化學 (IHC)


  免疫組織化學 (IHC) 是一種利用抗體-抗原相互作用來了解組織切片中抗原的分布和定位的方法。盡管 IHC 的定量程度低于蛋白質(zhì)印跡或 ELISA,但它具有在完整組織中表征蛋白質(zhì)表達的優(yōu)勢。


  IHC 通常用于診斷癌癥等疾病中的組織異常。IHC 提供了寶貴的觀點和支持,可以將從其他方法獲得的數(shù)據(jù)結合起來。


  IHC 染色依賴于識別目標抗原的抗體。您可以使用顯色或基于熒光的檢測系統(tǒng)來可視化這種抗體-抗原相互作用。在顯色檢測中,抗體與酶結合,當暴露于顯色劑時會產(chǎn)生有色沉淀。在熒光檢測中,抗體與熒光團綴合。樣品制備和可視化有多種技術,所使用的方法應根據(jù)您的標本類型和所需的靈敏度程度進行定制。


  免疫細胞化學(ICC)


  免疫細胞化學 (ICC) 用于使用標記抗體研究蛋白質(zhì)的亞細胞分布。與 IHC 不同,該技術側重于細胞樣本而不是組織塊。


  在 ICC 染色中,針對目標蛋白質(zhì)產(chǎn)生的抗體應用于已固定和透化的細胞培養(yǎng)樣品。ICC 有兩種類型:直接和間接。直接 ICC 使用偶聯(lián)的一抗,而間接 ICC 涉及未偶聯(lián)的一抗,然后通過偶聯(lián)的二抗進行檢測。對于大多數(shù) ICC 實驗,抗體都用熒光團標記,這對于共定位研究來說是理想的選擇。各種成像技術,例如寬場、共焦或旋轉圓盤顯微鏡,可用于檢測信號。


  流式細胞儀和 FACS


  流式細胞術是一種流行的基于激光的技術,用于分析細胞或顆粒的特征。該技術測量與混合群體中單個細胞結合的標記抗體發(fā)出的熒光。此外,不同細胞對光的散射可用于確定它們的大小和特性。


  流式細胞術使您能夠分析細胞表面和細胞內(nèi)分子的表達,表征和定義異質(zhì)細胞群中的不同細胞類型,評估分離亞群的純度,并分析細胞大小和體積。它允許同時對單細胞進行多參數(shù)分析。


  熒光激活細胞分選 (FACS) 是流式細胞術的衍生技術,可根據(jù)熒光標記將細胞群物理分離成亞群。